2.2 Толщина панелей обычно составляет 100 мм, с обеих сторон они покрыты пластифицированным цветным стальным листом; на поверхности цветной стали выполнены скрытые пазы. Панели отличаются малым весом, высокой прочностью, хорошими теплоизоляционными свойствами, коррозионной стойкостью и устойчивостью к старению; они просты и быстры в монтаже, что делает их одним из лучших вариантов материала для теплоизоляционной оболочки холодильных камер.

　　2.3 Сердцевина панелей целиком вспенена из легкого полиуретана с отличными теплоизоляционными свойствами (соответствует материалу внутренней сердцевины морозильных камер); ее теплоизоляционные характеристики особенно высоки.

　　2.4 Двусторонние панели из цветной стали оснащены современными эксцентриковыми крюками и пазовыми крюками; эксцентриковое соединение обеспечивает плотные стыки между панелями, а отличная герметичность сводит к минимуму утечку холодного воздуха и усиливает теплоизоляционный эффект. Холодильные камеры, собранные из Т-образных панелей, стеновых панелей и угловых панелей, можно возвести в любом помещении — это просто, практично, энергоэффективно и экологично.

3. Раздел электрического управления

　　3.1 Электрический шкаф управления, расположенный снаружи холодильной камеры, имеет функцию автоматического переключения двух цепей, обычно подразумевающую основной и резервный источники питания.

　　3.2 Он может управлять автоматическим переключением между основным и вспомогательным компрессорами, в цифровом виде отображает температуру в камере, а также имеет функции автоматического мониторинга, регулирования, отображения и сигнализации о достижении верхнего и нижнего пределов температуры. Для записи температуры используются самые современные регистраторы температуры.

4. Раздел холодильного оборудования

　　4.1 Предусмотрен резервный холодильный агрегат: установлены два компрессора мощностью 3P, которые эксплуатируются поочередно.

　　4.2 Холодильное оборудование холодильной камеры — в первую очередь вопрос выбора компрессора и испарителя для холодильной камеры. Как правило, в небольших холодильных камерах в основном используются полностью герметичные фторные холодильные компрессоры. Поскольку полностью герметичные компрессоры имеют малую мощность и относительно невысокую стоимость, а оборудование работает стабильно с низким энергопотреблением и низкой частотой отказов, в настоящее время они являются предпочтительными агрегатами для холодильных камер.

　　Для хранения вакцин, фармацевтических препаратов и т. д., подходят для больниц, университетов и научно-исследовательских институтов, это специализированные термостатические устройства для хранения и демонстрации биологических образцов, могут использоваться для научных исследований и учебных демонстраций.

VI. Выбор и приобретение холодильной камеры

1. Выбор испарителя внутри холодильной камеры

　　Существует два типа испарителей: трубные змеевики и потолочные воздухоохладители. Как правило, в высокотемпературных (охлаждаемых) холодильных камерах в качестве испарителей используются воздухоохладители, которые отличаются быстрым охлаждением, но могут приводить к потере влаги охлаждаемыми товарами; в средне- и низкотемпературных холодильных камерах в основном используются испарительные змеевики из бесшовной стальной трубы, которые отличаются стабильностью температурного режима и способностью своевременно аккумулировать холод.

2. Выбор холодильного агрегата

　　Холодильный компрессор, собранный с такими комплектующими, как конденсатор, называется холодильным агрегатом; холодильные агрегаты бывают водоохлаждаемыми и воздухоохлаждаемыми. В небольших холодильных камерах в основном используются воздухоохлаждаемые агрегаты. Компрессор холодильного агрегата является «сердцем» холодильной камеры; распространенные компрессоры бывают отечественного или импортного производства, полугерметичного и полностью герметичного типов.

Раздел 8. Система дезинфекции и стерилизации медицинской лаборатории

　　Поскольку в лаборатории ежедневно контактируют с большим количеством образцов — включая кровь, мочу, кал, мокроту, плевральную и перитонеальную жидкость,

пункционную жидкость, желчь и т. д. — в работе медицинской лаборатории правильная дезинфекция и индивидуальная защита, а также обработка образцов по рациональным процедурам являются основными мерами для эффективного контроля внутрибольничных (приобретенных в больнице) инфекций.

I. Зонирование медицинской лаборатории и содержание дезинфекционных работ

Зонирование: по степени контаминации лаборатория подразделяется на чистую зону, полуконтаминированную зону и контаминированную зону.

　　Объекты дезинфекции: например, дезинфекция контаминированных бланков заявок на лабораторные исследования, дезинфекция воздуха, дезинфекция исследовательского оборудования, дезинфекция рук, дезинфекция утилизируемых образцов и дезинфекция общих поверхностей внутри помещения.

II. Методы и меры дезинфекции

　　1. Дезинфекция контаминированных бланков заявок на лабораторные исследования: используют высокоинтенсивный ультрафиолетовый стерилизатор, медленно перемещая его на высоте не более 3,0 см над плоскостью бланка, облучают с обеих сторон в течение 3–5 секунд. Также допускается фумигация в формальдегидном стерилизаторе с продолжительностью обработки более 2 часов.

　　2. Дезинфекция воздуха: дезинфекция воздуха облучением ультрафиолетовыми лампами обычно применяется во всех зонах лаборатории; также используется дезинфекция с помощью озонаторов (в настоящее время озонаторы реже применяются в больницах). Операции, сопровождающиеся образованием инфекционных аэрозолей в контаминированной зоне, особенно при работе с возбудителями заболеваний, передающихся воздушно-капельным путем, проводятся в боксе биологической безопасности, благодаря чему воздух выводится наружу через бактериальный фильтр или канал термической стерилизации; это позволяет минимизировать контаминацию.

　　3. Дезинфекция различных поверхностей в контаминированной зоне. Дезинфекция таких поверхностей, как столы и стулья: перед началом работы каждый день протирают их один раз влажной тканью; пол моют один раз влажной шваброй; сухая протирка и сухая уборка запрещены. Ткани и швабры должны быть индивидуальными для каждого помещения, смешивать их запрещено. Перед окончанием работы поверхности протирают один раз раствором с содержанием активного хлора 250–500 мг/л или 0,1–0,2%-м раствором перуксусной кислоты. Дезинфекция пола: мытье вышеуказанным дезинфицирующим средством с двойной концентрацией.

　　4. Одноразовые изделия из пластика: например, одноразовые шприцы после использования подлежат уничтожению и дезинфекции. Пленочные перчатки после использования помещают в мешки для медицинских отходов для централизованной безвредной утилизации. Небрежная утилизация после использования приводит к вторичной контаминации и не обеспечивает защиту персонала.

　　5. Дезинфекция персонала: сотрудники лаборатории, которым необходимо посещать палаты для забора крови, должны быть аккуратно одеты, носить маски и перчатки. При заборе крови строго соблюдается принцип «один человек — одна игла — один жгут». Если сотрудникам во время работы нужно попить воды, воспользоваться туалетом или совершить другие действия, а также при окончании работы они обязаны тщательно вымыть руки; при контаминации кожи или одежды персонала образцами или загрязнениями проводится тщательная дезинфекция и мытье.

　　6. Дезинфекция приборов: все приборы, используемые при проведении исследовательских операций и подлежащие дезинфекции, дезинфицируются по категориям в строгом соответствии с протоколами дезинфекции, что исключает перекрестную контаминацию во время экспериментов, позволяет не допустить влияния на результаты исследований и перекрестного заражения сотрудников лаборатории.

　　7. Утилизируемые образцы: к утилизируемым образцам, таким как моча, плевральная жидкость, асцитическая жидкость, спинномозговая жидкость, желудочный сок и жидкость суставных полостей, добавляют 5 г хлорной извести на каждые 100 мл, тщательно перемешивают, выдерживают в течение 2–4 часов, после чего выливают в контейнер для сбора медицинских отходов. Мокроту, гной, кровь, кал и другие твердые образцы сжигают или смешивают с двойным количеством хлорной извести, выдерживают в течение 2–4 часов (для образцов от пациентов с гепатитом и туберкулезом время выдержки увеличивают до 6 часов), после чего помещают в контейнер для сбора медицинских отходов.

  1. Обработка отходов и сточных вод: все отходы лаборатории подлежат управлению в соответствии с Положением об управлении медицинскими отходами и Мерами по управлению отходами медицинских и лечебно-профилактических учреждений, их подробную регистрацию ведет назначенный сотрудник. Все сточные жидкости лаборатории сначала подлежат дезинфекции, затем обрабатываются на специализированной станции очистки сточных вод больницы перед сбросом в муниципальную канализационную сеть, чтобы предотвратить распространение патогенов со сточными водами и причинение вреда обществу.

III. Стерилизационное оборудование

1. Ультрафиолетовые лампы

　　Ультрафиолетовая лампа — это искусственно изготовленная ртутно-кварцевая лампа низкого давления: ртуть запаяна в кварцевую стеклянную трубку, при подаче электричества ртуть испаряется и излучает ультрафиолетовый свет. Стерилизация и дезинфекция проводятся через трубку ультрафиолетовой лампы. Бактерицидная эффективность УФ-излучения тесно связана с длиной волны: наибольшая бактерицидная способность наблюдается при длине волны 250–260 нм, а 250 нм обычно принимают за репрезентативную бактерицидную длину волны. Отечественные УФ-трубки выпускаются мощностью 15 Вт, 20 Вт и 30 Вт, все с длиной волны 250 нм. В основном они используются для дезинфекции воздуха и поверхностей предметов.

1.1 Способ применения

　　1.1.1 Установка ультрафиолетовых ламп для стерилизации: УФ-трубки облучают через подвесные или передвижные стойки для ламп. При использовании подвесной ультрафиолетовой дезинфекции в помещении количество установленных в нем УФ-дезинфекционных ламп (УФ-лампы мощностью 30 Вт, интенсивность > 70 мкВт/см² на расстоянии 1,0 м) должно составлять в среднем не менее 1,5 Вт на кубический метр, а время облучения — не менее 30 минут.

　　1.1.2 При использовании для дезинфекции воздуха двери и окна должны быть закрыты; каждая процедура дезинфекции длится не менее 60 минут, отсчет времени начинается через 5–7 минут после включения лампы; во время облучения персоналу запрещено входить в помещение, если для работы требуется вход, облучение необходимо остановить.

　　1.1.3 При дезинфекции предметов разложите или развесьте их, чтобы увеличить облучаемую поверхность; эффективное расстояние составляет один метр, время облучения — не менее 30 минут.

　　1.1.4 Среда, в которой используется ультрафиолет, должна содержаться в чистоте, воздух не должен содержать пыли и водяного тумана; при температуре в помещении ниже 20 °C или относительной влажности более 50 % время облучения следует увеличить. Никогда не проводите УФ-дезинфекцию сразу после мытья пола; рекомендуется дождаться высыхания пола перед дезинфекцией ультрафиолетовой лампой. В помещениях для водоподготовки с высокой влажностью, помимо увеличения времени облучения, персонал должен входить только через полчаса после завершения облучения, либо использовать автоматическое ультрафиолетовое облучение в ночное время.

　　1.1.5 Поверхность УФ-трубок должна содержаться в чистоте, без пыли; протирайте их один раз в неделю ватным тампоном с 95%-м этанолом и делайте соответствующую запись.

　　1.1.6 Ультрафиолетовое излучение наносит определенный вред коже и слизистым оболочкам человека; принимайте защитные меры и никогда не смотрите прямо на источник УФ-излучения глазами.

　　1.1.7 Для каждой ламповой трубки должен вестись журнал учета времени работы, с одной записью на каждое облучение; срок службы составляет 1000 часов, либо один раз в шесть месяцев проводите проверку с помощью индикаторной карты интенсивности УФ-излучения и вклеивайте результат в журнал. Обратите внимание, что индикаторные карты интенсивности УФ-излучения имеют относительно короткий срок годности — покупайте их понемногу и часто (примечание: у новых трубок результат проверки должен быть не ниже 90 мкВт/см², у используемых трубок — не ниже 70 мкВт/см²). Если после 1000 часов работы УФ-трубки результат ее проверки по-прежнему не ниже 70 мкВт/см², проверку следует проводить каждые 30 часов; при падении интенсивности облучения ниже 70 мкВт/см² трубку необходимо заменить.

2. Автоклав (паровой стерилизатор высокого давления)

　　Автоклав, также называемый паровым стерилизатором высокого давления, подразделяется на переносные стерилизаторы и вертикальные автоклавы. Это устройство, которое использует электронагревательные элементы для нагрева воды с целью получения пара и поддержания определенного давления.

　　Он подходит для сферы здравоохранения, особенно для клинических лабораторий больниц, для дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов, перевязочных материалов и стеклянной посуды — это идеальное стерилизационное оборудование. Автоклав является одним из незаменимых видов лабораторного оборудования и играет неповторимую роль в стерилизации питательных сред. Кроме того, при утилизации отходов все отходы, содержащие патогенные микроорганизмы, подлежат обязательной стерилизации перед тем, как их можно будет обработать как обычные отходы. В частности, брызги или утечки, которые могут возникнуть во время рабочих операций, необходимо эффективно дезинфицировать для уничтожения патогенных микроорганизмов и защиты обслуживающего персонала. Паровой стерилизатор высокого давления на сегодняшний день является одним из наиболее широко используемых и эффективных стерилизационных устройств.

　　Принцип паровой стерилизации под высоким давлением заключается в следующем: при нормальном атмосферном давлении вода кипит при температуре около 100 °C, а с ростом давления пара температура кипения соответственно повышается. Таким образом, в герметичном автоклаве когда манометр показывает повышение давления пара до 15 psi (1,05 кг/см²), температура соответствует отметке 121,3 °C; при этой температуре за 20 минут можно полностью уничтожить вегетативные формы бактерий и их споры.

　　В медицинских лабораториях автоклавы в основном используются в отделениях микробиологии, лабораториях ВИЧ, лабораториях секвенирования генов, моечно-дезинфекционных помещениях и т. д. В лабораторной практике широко применяются вертикальные автоклавы.

3. Озоновая дезинфекция

　　В медицинских условиях для эффективного контроля содержания микроорганизмов в чистых зонах асептического производства необходимо подбирать подходящие дезинфицирующие и стерилизующие средства для уничтожения бактерий, присутствующих в воздухе чистой среды и оседающих на поверхностях механизмов, пресс-форм, емкостей и строительных конструкций. Это позволяет поддерживать чистоту среды, требуемую для производства «стерильных лекарственных средств».

　　Если требования к эффективности дезинфекции нестрогие, рекомендуется использовать настенный или передвижной озоновый стерилизатор; при наличии системы центрального кондиционирования в первую очередь рекомендуется озоновый стерилизатор, адаптированный для систем кондиционирования, предпочтительно с возможностью внешней установки; если центральное кондиционирование отсутствует или его использование неудобно, рекомендуется канальный озоновый стерилизатор — помимо гарантии дезинфекционного эффекта, в дальнейшем при необходимости проведения дезинфекции системы центрального кондиционирования не потребуется дополнительно приобретать еще один озоновый стерилизатор.

3.1 Преимущества озоновой дезинфекции и стерилизации

3.1.1 Отсутствие мертвых зон — озон проникает повсюду. Ультрафиолетовое излучение оказывает бактерицидное действие только тогда, когда достигает поверхности объекта с определенной интенсивностью облучения; интенсивность УФ-облучения совершенно недостаточна, особенно на расстоянии, а обработка оставляет большие мертвые зоны. Озон представляет собой газ с высокой проникающей способностью, хорошей диффузией и равномерной концентрацией, не оставляющий мертвых зон.